Podridão-parda da haste da soja

(Curadoria Agro Insight)

Hoje, a curadoria Agro Insight traz um estudo que avalia a suscetibilidade de genótipos de soja à podridão-parda.

Sintomas

A partir do enchimento de grãos, pode ser observado escurecimento do sistema vascular e da medula de haste e de raiz (Figura 1). Esses sintomas podem ser acompanhados de clorose e necrose internerval de folhas (folha carijó). A doença não apresenta sintoma externo na haste. Em casos severos, ocorre intensa queda de vagens e as plantas podem apresentar rápido murchamento das folhas.

Condições de desenvolvimento

O fungo sobrevive em restos culturais de soja e no solo e não é disseminado por sementes. A infecção ocorre através do sistema radicular, aproximadamente 30 dias após a germinação de sementes. O aumento da intensidade de sintomas, é favorecido por temperatura do ar entre 15°C e 27ºC e alta umidade do solo após florescimento.

Controle

Utilizar cultivares resistentes e rotação de culturas. Para evitar a introdução da doença em novas áreas, deve-se realizar limpeza de máquinas e implementos.

Figura 1. Podridão parda da haste. Foto: Leila M. Costamilan

Podridão-parda da haste: reação de genótipos de soja, na safra 2021/2022

A podridão-parda da haste da soja, causada pelo fungo de solo Cadophora gregata (sin. Phialophora gregata), já foi relatada em lavouras de soja nos Estados Unidos, Argentina, Canadá, Egito, Porto Rico, Japão, Croácia, Sérvia e Brasil (Cadophora…, 2021).

No início da década de 1990, foi predominante em cultivares muito plantadas na época, como IAS 5, BR-4 e Cobb, no Rio Grande do Sul, Santa Catarina e no sul do Paraná. Atualmente, encontra-se controlada, no Brasil, principalmente pelo uso generalizado de cultivares resistentes.

C. gregata é um patógeno necrotrófico de desenvolvimento lento na planta. Após a infecção inicial em raízes, promove uma fase latente longa, podendo durar semanas, sem causar sintomas visíveis da doença (McCabe; Graham, 2020). A partir do estádio de enchimento de grãos, causa desfolha e abortamento de vagens, mas o sintoma característico, o escurecimento da medula da haste, pode estar presente antes dos sintomas externos. Em Passo Fundo, RS, a doença foi responsável pela redução de 22% no rendimento de grãos de cultivares de soja de ciclo precoce, de 27% em cultivares de ciclo médio, e de 35%, em cultivares de ciclo tardio (Bonato; Costamilan, 1992).

A temperatura ideal para o desenvolvimento da doença encontra-se entre 15 ºC e 27 ºC, pouco ou nenhum sintoma na haste desenvolve-se a 32 ºC e não há sintomas foliares acima de 35 ºC. Sintomas foliares são mais visíveis com clima úmido e ameno durante o estádio reprodutivo (Malvick et al., 2015).

Isolados de C. gregata enquadram-se em dois subtipos: Tipo A (ou genótipo A), que causa escurecimento na medula, clorose/necrose em folhas e desfolha, e Tipo B (ou genótipo B, também chamado de genótipo M), que causa apenas escurecimento na medula (Malvick et al., 2015). O genótipo A está associado, principalmente, a cultivares suscetíveis, causando maior severidade de sintoma foliar e de colonização de hastes que o genótipo B (Hugues et al., 2002; Tabor et al., 2007), levando a reduções de rendimento superiores a 30%.

O genótipo B ocorre, predominantemente, em cultivares resistentes. Diferenças de rendimento entre cultivares resistentes e suscetíveis são significativamente menores quando somente o sintoma na medula é observado (Tabor et al., 2007). A intensidade da necrose do tecido internerval das folhas é dependente da agressividade do isolado de C. gregata, levando à desfolha a partir do estádio R5 de desenvolvimento (durante o enchimento de grãos, segundo Fehr et al., 1971).

O manejo da doença é limitado ao uso de cultivares resistentes (forma mais efetiva de controle) e à rotação de culturas de longo prazo. O uso intensivo de cultivares suscetíveis, sem rotação de culturas e/ou de cultivares, e o não revolvimento do solo aumentam o nível de inóculo do patógeno e favorecem o desenvolvimento da doença (Malvick et al., 2015). O uso de cultura não-hospedeira por três anos, no mínimo, geralmente reduz a incidência e a severidade da doença (Malvick et al., 2015).

Há quatro genes independentes que controlam a resistência: Rbs1, Rbs2 e Rbs3, identificados no cromossomo 16, grupo de ligação molecular J (Malvick et al., 2015; McCabe et al., 2018) e o quarto gene na PI 594858B (McCabe et al., 2016). Este patógeno induz uma resposta de defesa em duas fases em plantas de soja contendo Rbs3 (McCabe; Graham, 2020).

Na primeira, a imunidade induzida por PAMP (pathogen-associated molecular pattern) ocorre em folhas, de 12 horas a 24 horas após inoculação. Na segunda, verificada 36 horas após inoculação, as defesas mediadas pelo gene de resistência Rbs3 promovem a imunidade induzida por efetores nas hastes. Nesta fase, o componente de resistência mais importante é a sinalização mediada pelo ácido jasmônico (McCabe; Graham, 2020).

O estudo

O estudo foi realizado no campo experimental II da Embrapa Trigo, em Coxilha, RS, situado a 15 Km de distância de Passo Fundo, em solo com elevada infestação natural de C. gregata. Em 25 de novembro de 2021, 290 genótipos
de soja, provenientes da Embrapa Trigo, Embrapa Soja e Embrapa Cerrados, separados em grupos transgênicos e convencionais.

Foram semeados em parcelas experimentais formadas por duas fileiras de 2,20 m de comprimento, espaçadas em 0,50 m, com 100 sementes cada, em duas repetições. As testemunhas suscetíveis BRS 242RR e BMX Zeus IPRO (55I57RSF IPRO) foram semeadas a cada 50 genótipos.

Avaliações

Avaliações visuais do porcentual de plantas com sintomas foliares da doença (necrose internerval) em toda a parcela foram realizadas semanalmente, de 22 de março a 25 de abril de 2022, durante os estádios de desenvolvimento R5 (enchimento de grãos) a R6 (máximo volume de grãos), pela escala de Fehr et al. (1971). Para caracterização da reação, usou-se a seguinte escala, baseada na porcentagem de plantas com sintomas foliares: 0 a 10% = resistente (R); 11% a 30% = moderadamente Podridão-parda da haste 5 resistente (MR); 31% a 60% = moderadamente suscetível (MS); 61% a 80% = suscetível (S); e 81% a 100% = altamente suscetível (AS) (Costamilan et al., 2020). Para classificação da reação, considerou-se a nota mais alta, obtida em qualquer data de leitura.

Resutados

A safra de soja 2021/2022, no Rio Grande do Sul, foi caracterizada por longos períodos de seca e por temperaturas do ar acima da média histórica, principalmente nos meses de dezembro de 2021 e janeiro de 2022, quando foram registrados 26 dias com temperatura máxima acima de 32 ºC e escassez de chuva variando entre 79% em dezembro e 59% em janeiro. Essas situações climáticas não foram favoráveis ao pleno desenvolvimento de sintomas foliares da podridão-parda da haste, além de retardarem o desenvolvimento das plantas.

O resultado de severidade da doença e a reação, por genótipo de soja, estão apresentados na Tabela 1. Dos 290 genótipos avaliados, 66,9% apresentaram reação de resistência, 13,1% apresentaram reação de moderada resistência,
16,2%, de moderada suscetibilidade, 2,8%, de suscetibilidade e 1,0%, de alta suscetibilidade.

Existem genótipos de soja, no programa de melhoramento genético da Embrapa, que possuem resistência à podridão-parda da haste, na safra 2021/2022. Recomenda-se que a reação dos genótipos considerados resistentes seja confirmada em safras posteriores, devido às condições climáticas desfavoráveis para a melhor manifestação de sintomas, ocorridas na safra 2021/2022.

BIBLIOGRAFIA E LINKS RELACIONADOS

COSTAMILAN, L. M.; BERTAGNOLLI, P. F.; MELO, C. L. P. de; MOREIRA, J. U. V.; PEREIRA, A. F.; CLEBSCH, C. C. Podridão-parda da haste: reação de genótipos de soja, na safra 2021/2022. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2022. 16p. (Embrapa Trigo. Circular técnica, 72).

BONATO, E. R.; COSTAMILAN, L. M. Reações de cultivares de soja à infecção natural de Phialophora gregata em condições de campo. Fitopatologia Brasileira, v. 17, n. 2, p. 156, 1992.

BRASIL. Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Formulários para registro de cultivares.

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COSTAMILAN, L. M.; BERTAGNOLLI, P. F.; MOREIRA, J. U. V.; MELO, C. L. P. de; PEREIRA, A. F.; OLIVEIRA, A. C. B. de. Podridão-parda da haste da soja: reação de genótipos de soja, na safra 2019/2020. Passo Fundo: Embrapa Trigo, 2020. 17 p. (Embrapa Trigo. Circular técnica online, 51).

FEHR, W. R.; CAVINESS, C. E.; BURMOOD, D. T.; PENNINGTON, J. S. Stage of development descriptions for soybeans, Glycine max (L.) Merrill. Crop Science, v. 11, n. 6, p. 929-931, 1971.

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MALVICK, D. K.; GRAU, C. R.; GRAY, L. E. Brown stem rot. In: HARTMAN, G. L.; RUPE, J. C.; SIKORA, E. J.; DOMIER, L. L.; DAVIS, J. A.; STEFFEY, K. L. Compendium of soybean diseases and pests. 5th ed. St. Paul: The American Phytopathological Society, 2015. p. 64-67.

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